2016年的27个热质粒

由泰勒福特

All_Flames.png每季度,我们通过我们突出了存储库中的新质粒的子集热质粒的文章.这些简短的文章突出了分粒细胞或一组质粒的主要特征和应用。我们希望这些文章能够更轻松地找到和使用所需的质粒。您可以从下面的2016年找到所有热质粒。含有超过45,000个质粒,我们不能为储存库中的每种伟大质粒写帖子,但务必如果你想写信,请告诉我们关于你的质粒的博文。没时间看书?听着我们的热质粒段在加入播客。

把质粒:

3月(Q1)|6月(Q2)|2016年9月(Q3)|2016年12月(第三季)


2016年3月
增强活动映射与STARR-seq

STARR-SEQ.

虽然已经开发了许多技术来研究增强剂的功能、强度和结合(例如:DHS-seqFaire-SEQ., 和芯片SEQ.),由于增强子序列在不同染色质状态的可用性不同,全基因组的识别和量化增强子活性仍然具有挑战性。亚历山大·斯塔克分子病理学研究所的同事们开发了一种替代方法,被称为STARR-seq(自转录活性调节区域测序),它在内源性染色质环境之外测试增强子序列,依赖于增强子的功能独立于其相对于转录起始位点的位置。在STARR-seq中,随机剪切的基因组文库被克隆到最小启动子序列的下游。如果这些随机的DNA片段中有一个包含增强子,它将从最小启动子激活自己的转录,其强度可以通过使用下一代测序从其在输入水平上的富集来确定。STARR-seq主干可以从Addgene中获得人类版本。

吴实验室人类慢病毒CRISPR文库

吴实验室Crispr图书馆

CRISPR汇总图书馆使研究人员能够筛选整个基因组中调控各种表型的基因,包括但不限于细胞生长和耐药性。最近,吴实验室德克萨斯理工大学开发了一个聚合CRISPR敲除文库,并使用该文库筛选与西尼罗河病毒(WNV)诱导细胞死亡有关的基因。

Wu实验室文库由77406个个体grna组成,共针对人类基因组中的20121个基因(可以找到基因和目标序列的一致性)在这里).为了使用该库,作者将其包装到慢病毒中,并利用由此产生的慢病毒库生成一个表达针对单个基因的单一gRNA的HEK293FT细胞群。然后用表达cas9的质粒转染gRNA表达细胞,生成突变细胞群体。以足以杀死所有对照细胞的剂量和持续时间对突变细胞进行处理,并对幸存的“突变”菌落进行深度测序,以识别保护WNV的gRNAs。通过这种筛选,作者能够鉴定出7个以前未被怀疑的基因,它们在er相关降解(ERAD)中发挥已知的作用,正调控WNV诱导细胞死亡的能力(SEL1L, UBE2J1, EMC3, EMC2, DERL2, UBE2G2和HRD1)。

吴实验室敲除库是可用的随着越来越多的CRISPR图书馆从Addgene的存储库中提取,可以用于对人类细胞进行筛选。关于如何使用CRISPR集合库以及良好筛选实验的标准的一般信息可以在我们的博客文章中找到“利用CRISPR/Cas9进行全基因组筛选”.有关WU实验室库的详细信息可以在其中找到相关的出版物

PRESTO-TANGO:药物发现的开源资源

Presto-Tango测定

近三分之一的所有药物靶G蛋白偶联受体(GPCR)然而,人类基因组中的三分之一的GPCR是孤儿受体,其意味着它们的配体是未知的。鉴定孤儿GPCR的新配体具有显着的医学兴趣,然而,缺乏缺乏工具,化合物和测定来阻碍缺乏的工具,化合物和测定来阻碍这些受体的激活。布莱恩罗斯的实验室有一个新可用的PRESTO-TANGO工具包这使得研究人员使用快速,负担得起和无处不在的记者测定来询问可用于毒性人GPCR-OME。在他们最近的出版物中,Kroeze等人.描述他们的增强探戈诱导募集测定掺入314个密码子优化的人体细胞系表达的GPCR序列。在古典探戈测定的扭曲中,Kroeze等人。通过转录输出 - 探戈开发了一种具有平行受体 - OME表达和筛选的新方法(Presto-Tango.)针对整个试剂盒筛选NCC-1批准药物库;一项平行分析,成功识别出新的、高度特异性的孤儿GPCRs激动剂,证明了该平台在药物发现中的实用性。研究人员可以直接使用PRESTO-TANGO试剂盒中的质粒进行药物筛选,或者轻松地将经过优化、表达验证的GPCR序列传输到任何所需的主干。

CIDAR MoClo部件套件

CIDAR MoClo部件套件

合成生物学家和基础生物学家通常都需要测试多种表达系统,才能达到他们感兴趣的基因的适当表达水平。尽管涉及改变基因表达的部分是众所周知的,特别是在细菌中,克隆、结合和测试这些不同部分的过程可能是相当艰巨的。仅克隆过程就涉及大量的文献检索、DNA合成和质粒组装。幸运的是,研究人员道格拉斯Densmore的实验室波士顿大学极大地简化了生成倍数的过程大肠杆菌基因表达质粒与设计自动化研究实验室Moduclar克隆的跨学科整合(CIDAR MoClo)部分设备。

该试剂盒由多种质粒组成,质粒包含许多不同的启动子、RBS '、编码序列(CDS)和不同强度的终止子。这些可以很容易地与你感兴趣的基因结合,并使用低成本的一罐法克隆到提供的目标载体中金门克隆这导致了许多的创造大肠杆菌具有不同表达水平的构念。CIDAR MoClo Parts Kit中的93个质粒可作为甘油储存在单个板中,每个质粒或作为单个质粒作为琼脂刺运输。

RAS途径克隆收集2.0

RAS途径克隆收集Ras蛋白是一种小型GTPases,参与细胞信号通路,控制许多细胞过程,如分化、增殖和凋亡。在人类中,三分之一的癌症中发现了永久激活Ras基因的突变,包括高百分比(高达95%)的胰腺癌。Ras致癌基因在治疗上很难靶向,这在很大程度上是由于Ras蛋白在细胞信号转导中发挥的核心作用。了解Ras信号通路中的分子如何相互作用将使科学家开发出更好的抗癌策略。为了促进创新的癌症研究,NCI的参考试剂组RAS倡议为首的Dominic Esposito.最近,该公司向科学界发布了一组360 Ras通路质粒。

这个集合由来自RAS信号通路的人群型谱的基因的质粒组成,包括180个独特的转录物。选择每个基因以表示38种人癌中的主要剪接变体。许多现有源无法从其他现有来源获得,并且在打开(无停靠密码子)中提供并关闭(包括终止密码子)格式。该集合与标准网关克隆和兼容FNLCR组合克隆平台(CCP);后者极大地提高了该集合的实用性,因为它可以方便地创建与表位或荧光团融合的蛋白表达结构,生成具有各种适合于体内表达的启动子的表达载体,以及/或生成用于突变细胞系或转基因动物的载体。

牛津果蝇Crispr.1图书馆

牛津果蝇克里普尔特图书馆Addgene拥有分销的特权几个人类和鼠克里普普尔汇集了图书馆,但多亏了实验室的沉淀物刘建博士在牛津大学,我们现在提供强大的基于CRISPR的筛选来源果蝇社区。集合库,设计用于培养果蝇细胞,靶向13,501个与至少三个独立的GRNA的飞基因,每个GRNA策略性地选择,以最大化通过架构产生功能敲除的可能性,并最大限度地减少偏离目标效果。图书馆被克隆到刘实验室自己pAc-sgRNA-Cas9昆虫表达骨干,从a表达grna果蝇U6:2启动子和Cas9来自actin 5c启动子。加入飞图书馆网页提供了更多的细节和协议,刘实验室的OXfCRISPR页面为希望利用这一强大的基因组工程工具的果蝇实验室提供了许多其他有用的资源。

GMAP -一个新的组装平台,生成简单和复杂的DNA结构

基于Gibson装配的模块化装配平台

你是否曾经希望你能设计一个基因敲除或过表达实验,生成必要的结构,并在短短3天内完成筛选?多亏了Tyler Jacks的实验室,这个3天的目标现在可以实现了。的杰克实验室最近推出了一个名为GMAP的新装配克隆平台(基于Gibson组装的模块化装配平台)。GMAP基于吉布森大会该方法利用序列的同源性区域(通常为30-40bp重叠),可以方便地组装DNA片段。为了扩展Gibson组装的能力,并打造一个更模块化的平台,Jacks实验室生成了5个常见的30bp重叠序列(Sites #1-5)。每个重叠位点编码一个独特的限制性内切酶位点和独特的引物位点,分别通过限制性内切酶和Sanger测序进行快速筛选。GMAP的速度和简单性使科学家能够轻松地设计、生成和测试由复杂遗传元素组成的结构。

为了展示垃圾的有用性,杰克斯实验室为各种各样的生物应用构建了几个GMAP兼容的载体。首先,Lentivirus的GMAP兼容骨架LV 1 - 5和逆转录病毒RV 2-5被建成了。然后,作者使用GMAP组件来建立超过30个启动子和140个基因的集合,包括具有独特的组织特异性启动子,表达GFP,四环素反应元件和SHRNA的组织特异性启动子可以在Addgene.由于GMAP装配利用了5个不同的重叠位点,这项技术也允许简单和快速地将复杂元件定位到特定的基因组位点。例如,作者生成了一个gmap兼容的主干,包含Rosa26同源臂。Rosa26位点通常用于驱动小鼠中靶基因的普遍表达。Jacks实验室利用这个主干将cag驱动的loxP-stop-loxP盒定位到Rosa26位点,允许GMAP插入基因的crea依赖表达。这种模块化系统的应用是无止境的,随着科学家们使用GMAP,可用于社区的兼容骨干、启动子和基因将会不断扩展。如果你计划在实验中使用GMAP,请考虑使用Addgene来沉积你的新质粒,以帮助扩大收集!

杰克实验室已经为科学界提供了几种GMAP兼容质粒通过Addgene

  • Akama-garren等人。j遗传学基因组学。2016. PUBMED.PMID: 26887506

多伦多KnockOut (TKO) CRISPR库

TKO CRISPR图书馆为了确定核心和上下文依赖的人体健身基因,杰森·莫法特的实验室多伦多大学的研究人员创造了多伦多KnockOut (TKO) CRISPR文库.这个复杂的第二代CRISPR慢病毒库以几乎所有的人类蛋白编码基因为目标,它的独特之处在于它由两个子库组成。第一个是碱基“90k文库”,包含约90000个grna,靶向约15000个基因,每个基因6个grna。第二种是一个“补充”库,每个基因包含额外的6个gRNA,使用稍微放松的gRNA设计参数生成。

为了证明其文库设计的有效性,莫法特实验室成员在不同的人类细胞模型中进行了多次筛选,并发现了约4-5倍于以往此类筛选的适应度相关基因。他们还能从功能上描述正面撞击。这项工作在牢房发表

莫法特实验室有网站用于包含最新信息和数据集的TKO库,以及交互式gRNA查看器.莫法特实验室也储存了Cas9和gRNA骨干质粒Addgene。用于TKO库的额外控制质粒将很快在Addgene提供。

pORTMAGE:跨平台细菌基因组工程的便携式方法


pORTMAGE工作流最近在基因组工程和合成生物学领域的发现改变了科学家在细菌中创造新的特征,并使得对许多生物过程进行了深入研究。虽然这些方法可用于容易修改基因组内的个体基因座,但它们倾向于在同时修改多个基因座(多路复用)时显示它们的限制。

目前,唯一能够快速,自动化和高通量基因组编辑的细菌中唯一的基因组工程方法是多路复用自动化基因组工程(法师)(1).法师使用重组(2)为了同时掺入多链DNA(SSDNA)寡核苷酸(寡核苷酸),从而快速培养所需的等位基因组合和组合基因组文库。法师允许基因组 - 工程努力在无与伦比的复杂性中大肠杆菌,比如构建所谓的“基因组编码生物体”(3.),但它对其他菌株的可移植性仍然受到严重限制,因为每个目标物种都需要事先进行优化。事实上,为了使用MAGE,需要在宿主菌株中表达λ Red重组酶,并抑制固有甲基定向错配修复(MMR)系统。

为了解决这个问题,Csaba朋友的实验室已经创造了一组载体,允许在未改良的细菌物种中使用MAGE方法(4).这套质粒(被称为pORTMAGE)表达λ红重组酶,以及优势阴性突变等位基因大肠杆菌MMR蛋白MutL,均受cI857温度敏感阻遏因子控制。MutL突变体的温控表达能够在寡核苷酸整合过程中瞬间抑制DNA修复,使MAGE在其他未修饰的菌株中(5).Mutl在遥远的亲戚中受到高度保守的大肠杆菌所以它可以被广泛使用。因此,pORTMAGE同时允许在几个生物技术和临床相关的细菌物种中进行基因组编辑和突变文库生成。

pORTMAGE载体为在广泛的细菌宿主中修饰基因组开辟了新的领域。这个神奇的工具现在可以在Addgene上使用,所以你可以成为“法师”,在细菌中创造新的性状。

  1. 王等。自然》2009。PubMedPMID: 19633652

  2. 法院,et al。Annu Rev Genet, 2002。PubMedPMID: 12429697

  3. Lajoie, et al。科学》2013。PubMedPMID: 24136966

  4. Nyerges, et al。美国国家科学院学报。2016. PUBMED.PMID: 26884157

  5. Aronshtam, et al。核酸Res. 1996。PubMedPMID:8692687

用ph敏感的荧光生物传感器Rosella跟踪酵母中的自噬

罗塞拉生物传感器一种ph敏感的荧光生物传感器为基础的检测系统最近沉积与AddgeneMark Prescott博士.Prescott博士和Rod Devenish博士(蒙纳士大学)最初开发了用于监测和分析酵母细胞中细胞溶胶和细胞器的自噬的系统。以鲜艳的澳大利亚鹦鹉,双色发射生物传感器命名罗萨斯该生物传感器的关键在于pH值:DsRed相对不敏感,而SEP在细胞pH值(7.0)时发出荧光,而在液泡pH值(6.2)时则不发出荧光。罗塞拉因此随细胞的颜色位置:它是红色和绿色的细胞,但变成更多的红色在低pH值(如空泡的)环境中灭活9月,只留下安全域(1)的萤光。与变异,可以针对特定的细胞隔间(Cytosol,addgene目录#71245线粒体,addgene目录#71247) Rosella提供了一种简单的方法来跟踪细胞物质进入酵母液泡的摄取,以及检查自噬途径背后的机制。


2016年6月

重新调整靶向DNA甲基化的CRISPR-CAS9系统

CRISPR甲基化研究表观遗传修饰的传统方法是使用DNA甲基转移酶或组蛋白去乙酰化酶等表观遗传修饰酶的抑制剂。不幸的是,这些抑制剂通常是非选择性的,影响整个基因组而不是特定的位点。为了克服这一缺陷Zoldos.该实验室开发了用于表观基因组编辑的CRISPR工具,能够精确研究特定的表观遗传修饰及其对基因调控的影响。

Zoldos教授和来自生物部的同事,分子生物学分工萨格勒布大学,通过将催化域(DCAS9)与来自DNA甲基转移酶DNMT3A的催化结构域融合,构建了基于CAS9的基于CAM9的工具,用于靶向CPG甲基化。合作表达修改Cas9与靶向特定基因组座位的GRNA一起导致遗迹甲基化。这种强大的工具已用于将甲基化与IL6ST和BACH2启动子的甲基化和降低。

更新的生物素化工具,以识别近似的蛋白质

Bioid2生物素化过程Roux实验室沉积了小版本鉴定蛋白质蛋白缔合法的流行生物素化方法中使用的混杂生物素连接酶的影响。该方法使用与生物素连接酶融合的诱饵蛋白,以在细胞中的生物素酸近似蛋白质。这些候选蛋白可以通过生物素下拉方法来富集并使用质谱法鉴定。

Roux实验室的BioID的新改进版本,称为BioID2,明显更小,允许更有选择性地靶向融合蛋白,需要更少的生物素,并显示了增强的近似蛋白标记。总体而言,BioID2提高了筛选蛋白质-蛋白质相互作用的效率。

鲁克斯实验室已经有了HA标记Bioid2.对于n末端融合和Myc标记BioID2c端融合。

FusX-TALEN装配系统

Fusx-Talen.作为核酸酶的TALEs (TALENs)是两种基因编辑工具在体外细胞系统和多样的模式生物。Addgene最新的TALEN试剂盒FusX装配系统斯蒂芬ekker实验室,是改良版的金门TALEN KIT(GGT)简化了故事的组装重复进入单管,3天过程,通过预先组装的三聚片来减少克隆步骤的数量。FUSX系统在斑马鱼中验证,并显示出在基因组靶向设计灵活性方面提供高活动和无与伦比的特异性。Fusx套件向后兼容,与先前为金门Talen和TAL效应套件2.0构建的所有TAL效应支架兼容。

妈,等。2015。PubMedPMID:26854857

addgene可用的FUSX兼容目标向量的示例:

实验室 质粒
丹卡尔森 RCIscript-GoldyTALENpC-GoldyTALEN
汤姆埃利斯 pTAL5-BBpTAL6-BB
大卫格鲁瓦尔德 PCS2TAL3-DDpCS2TAL3-RR
Pawel Pelczar PCAG-T7-TALEN(SANGAMO)-DESTINATION系列pCAG-Golden-Gate-Esp3I-Destination
Takashi Yamamoto. PCDNA-TAL-NC2pCAGGS-TAL-NC2
查尔斯Gersbach pcDNA3.1-GoldenGatepcDNA3.1-GoldenGate-VP64
Maria-Elena Torres-Padilla Ptalym3.ptalym4.
鲍里斯格林 pTAL7apTAL7b
米甲Zurovec pBlue-TAL
内森·劳森 PJDS系列

Superglue蛋白与SpyTag/SpyCatcher和SnoopTag/SnoopCatcher

SpyTag和SpyCatcher重组DNA技术的发展使分子生物学家能够以期望的顺序将DNA片段融合在一起,并在靶细胞中表达融合蛋白。除了基于核苷酸的连接策略外,当单个蛋白表达是首选或必需的,或者当细胞因其长度而难以合成或折叠蛋白质时,翻译后蛋白融合将是有利的。马克霍沃斯的实验室最近设计了一种新的肽/蛋白质对,SnoopTag / SnoopCatcher它可以通过自发的异肽键将所需的蛋白质不可逆地连接在一起。当与之前描述的SpyTag/SpyCatcher对结合使用时,通过交替使用SnoopTag/SnoopCatcher和SpyTag/SpyCatcher对,可以在迭代过程中合成多种蛋白融合。

为了提高组装这些多蛋白融合或“Polyproteams”的缓解和便利,罗拉明实验室创造了MBPx-SpyCatcher构造.该构建体用于产生麦芽糖结合蛋白/截止蛋白融合,其可以通过Spytag / Spycatcher和SnoOptag / Snoopcatcher键锚定用于通过SpyTag / Spycatcher和Snooptag / Snoopcatcher键的固相合成的固态合成。一旦制备了所有所需的顺序添加,可以使用麦芽糖洗脱最终的聚丙胺。该方法允许稳定和定向的蛋白质融合,其留在每种蛋白质单元之间存在的间距和侦听器连接器,并提供一种用于产生蛋白质链或簇的新方法。

Veggiani, et al。美国国立科学院科学研究所2016。PubMedPMID: 26787909

EasyClone 2.0酵母工具包

2.0 EasyClone向量许多行业,如食品和饮料行业、生物乙醇行业和制药行业,都依赖酵母,酿酒酵母作为生产其产品的主要宿主,包括发酵啤酒和葡萄酒,燃料,药物成分和重组蛋白。为了保持产量高,成本低,并处理越来越多的新化合物,需要工业酵母菌株的遗传优化。然而,由于它们是原型的,因此产业酵母菌菌株比常见的实验室酵母菌菌株更难以遗传修饰,因为它们是原型的,通常具有低水平的同源重组,并且可能难以转化。

增加工业酵母菌株的遗传工具箱,Borodina实验室最近设计了EasyClone 2.0工具包.EasyClone 2.0由25种含有长同源性臂和滋巢营养和主导选择标记的综合载体组成,允许与实验室和原型菌株一起使用。该载体基于原始EasyClone载体(Jensen等人,2013年)允许克隆多达两个基因与双向启动子,整合在11个特定的染色体位置,并稳定地表达整合基因。这些载体包含基于尿嘧啶切除的(用户)位于ADH1和CYC终止子的位点,以便于基因和启动子克隆。除用户克隆外,此工具包还与诸如融合等系统兼容,吉布森, 和MoClo.EasyClone 2.0套件已通过Addgene公开可用。

SAPTRAP,一种用于高吞吐量CRISPR / CAS9基因修改的工具包Caenorhabditis elegans.

Saptrap质粒组装管道CRISPR / Cas9t由于其简单,易于修改的RNA引导的靶向机制,Echnology已经在多种生物体中彻底改变了基因组编辑。然而,修复模板的艰苦建设和指导RNA构建体以及鉴定正确改性的生物所需的困难屏幕具有有限的常规使用该技术。简化基于CRISPR / CAS9的基于遗传标签插入C. Elegans.基因组,erik jorgensen的实验室从犹他大学发展起来SapTrap

SapTrap系统使用金门组装以产生单个质粒靶向载体,该载体既编码引导RNA转录本,又编码单个标记事件的修复模板。通常使用的序列,包括荧光标签,一个环状的Cbr-unc-119选择标记,以及连接标签到目标基因的“连接器”,从预先构建的供体质粒库提供反应,可从addgene..同源臂和引导RNA的位点特异性序列是作为退火合成寡聚体提供的,无需在质粒组装过程中进行PCR或额外的分子克隆步骤。

此工具包降低了生产用于在蠕虫中编辑的基因组编辑的vorpors所需的费用和工作负载,以便可以执行高吞吐量标记项目。

施瓦兹,et al。遗传学》2016。PubMedPMID:26837755.


2016年9月

Zika病毒质粒现在通过addgene途径

AEDES EGYPTI蚊子和ZIKA病毒Vaithi Arumugaswami实验室在西达斯-西奈医疗中心已经建造并保存了一套未发表的Zika病毒基因质粒到Addgene的存储库。来自Zika病毒亚洲基因型PRVABC59的基因是从CDC获得的,并克隆到第三代慢病毒转移载体中。每个基因都是标记的,用于方便的实验使用。蛋白质印迹和免疫组织化学验证质粒,总结在下表中:

ID 简历(衣壳) 国旗标签终点站
79629 (N)79628 (C) CV(Capsid) N和C
79633(n)79641 (C) ns1(var:w98g) N和C
79635. NS3 C
79637 NS2B. C
79636. NS4A N
79640 NS4B C
79639. NS5 C
79632 (N)79631(c) PRM. N和C

利用DULIP检测蛋白质相互作用

DULIP模式

蛋白质很少单独起作用。从信号转导到转运的分子过程依赖于蛋白质-蛋白质相互作用,因此识别和研究相互作用网络对确定这些系统如何工作很重要。在哺乳动物系统中筛选蛋白质-蛋白质相互作用的研究人员有许多方法可供选择,然而,这些方法并非没有限制。有些,比如众所周知的酵母2台混合动力分析不是研究原生哺乳动物蛋白质相互作用的最佳方法,而其他方法可能过于繁琐,无法进行高通量使用,或难以量化相互作用的强度。Erich卑鄙的小组在Max-Delbrueck的分子医学中心最近已经开发出一种称为郁金普(基于发光的共同免疫沉淀)的新方法,以克服其他方法的局限性,并允许研究人员在哺乳动物系统中鲁布利地识别和定量蛋白质 - 蛋白质相互作用。

DULIP系统由gateway兼容质粒组成,其中“诱饵”蛋白用Protein A-Renilla荧光素酶标记,“猎物”蛋白用Firefly荧光素酶标记。诱饵和猎物质粒被共转染,蛋白质使用Protein A标签从细胞中免疫沉淀。然后可以测量荧光素酶的活性,并将其标准化以评估相互作用。Co-IP中相对较高的萤火虫荧光素酶活性表明Co-IP具有更强的相互作用。该系统已被证明可以检测高和低亲和相互作用,识别点突变导致的相互作用强度的变化,适合于高通量应用。

利用Cas9-based AID标签快速、有条件地降解必需蛋白

援助标记七年前,Masato Kanemaki的实验室成功地使用了基于植物的生长素诱导降解技术在各种模型生物中有条件地击倒蛋白质。只要它表达在表达患有植物素敏感的TIR1的细胞中,就可以通过泛素化靶向融合其辅助标签的任何蛋白质。制冷素诱导的降解的关键特征是其工作的速度 - 辅助标记蛋白的典型半衰期在引入10-20分钟后,辅助研究基本蛋白的吸引力工具。

直到最近,将辅助标记系统应用于人体细胞和小鼠ES细胞的基本基因挑战,因为难以将辅助标签融为内源性蛋白质。如最近的那样细胞报告纸在美国,金卷实验室使用CRISPR技术克服了这一障碍。首先,他们使用CRISPR通过插入来创建表达ostir1的细胞系OsTIR1进入“安全港”AAVS1基因座(aTET-IMIBIBLE OSTIR1质粒也可用)。其次,他们共转染了含有mAID和其中任何一个的短臂供体载体Neo或者Hygro抗性标记与CRISPR /中科院瞄准其感兴趣基因的载体生成内源基因的女仆融合。然后可以选择具有适当融合的细胞系来使用指示的抗生素。此外,一些版本的女仆向量带来了mCherry2或mClover金宝搏app下载荧光蛋白允许您筛选融合。这种CRISPR和AID技术的组合提供了一种聪明的方法,可以在难以研究的细胞类型中调查难以研究的基因。

TRIBE:通过编辑确定的rna结合蛋白的靶标

埃及伊蚊携带寨卡病毒传统上难以识别RNA结合蛋白(Rbps)的靶标,因为夹子等技术需要特异性抗体和大量细胞来分析。一种新技术迈克尔Rosbash的实验室部落通过将RBP融合到RNA编辑酶ADAR的催化结构域,解决了这两个问题。该RBP-ADARcd融合蛋白不可逆地编辑mRNA结合区域的腺嘌呤残基,这些序列变化随后通过转录组测序确定。重要的是,使用TRIBE获得的结果优于CLIP, CLIP是表征RBP靶标的金标准。

部落的一个关键优势是所需的低输入 -麦克马洪et al .,报告使用多达150个苍蝇神经元作为他们的起始材料!因此,TRIBE可以用来分析给定组织中的特定细胞群,而不是混合样本。TRIBE是在果蝇并且需要进一步的工作来评估其在哺乳动物细胞或其他动物模型中的功能,但这种技术已经奠定了更好地分析RBP功能的基础。

PiggyBac介导的稳健CRISPR激活剂传递

PiggyBac我们之前报道了由教会实验室开发的新型Cas9的激活因子,称为“dCas9-VPR”,当引入哺乳动物细胞时,有助于靶基因的强大激活(比标准的dCas9-VP64激活剂高20-40倍)。

尽管VPR激活域对于试图激活靶基因的研究人员来说是一个令人难以置信的工具,但dCas9-VPR相对较大的体积限制了人们将其包装到慢病毒中并随后创建表达它的稳定细胞系的能力。教堂实验室通过创建一个新的DCAS9-VPR表达质粒利用piggybac转座酶将dCas9-VPR整合到目标细胞的基因组中。piggybac系统具有比慢病毒大得多的装载能力,并且能够通过直接转染有效地建立稳定的细胞系,从而不需要病毒。此外,dCAS9-VPR的表达受TRE启动子的控制,这允许强力霉素诱导表达。最终的结果是dCas9-VPR的基因组整合和通过强力霉素在靶细胞中控制dCas9-VPR转基因的表达。

这个质粒增加了不断增长的dCas9-VPR质粒的收集,其中已经包括Dsacas9-VPR在AAV转移载体中用于DCAS9-VPR表达的表达和质粒果蝇酵母

编辑双子叶植物的新工具

pDGE双子叶基因组编辑试剂盒Stuttmann实验室生成了该试剂盒中的载体,以便于将各种CRISPR工具应用于双子叶植物。的pDGE Dicot基因组编辑试剂盒含有Cas9,Cas9酸氨酸和Cas9活化剂,表达可共同表达1-8 GRNA的质粒。奥登等人,2016年测试了Cas9结构产生小(< 100 bp)和大(高达120 kb)缺失的能力n benthamiana和拟南芥。作者发现,缺失效率取决于1)Cas9和gRNA的剂量(这两种剂量都可以通过试剂盒中不同的启动子和分别通过改变串联表达gRNA的数量来调节)和2)缺失的大小。较小的缺失通常发生频率较高,可通过PCR检测到,而较大的缺失相对较少。该载体与金门克隆和农杆菌介导的传递兼容,使它们易于定制针对您感兴趣的基因。今天试一试!


2016年12月

用质粒恢复酵母肌醇


酵母原养型质粒虽然营养标记经常用于酵母中的选择,但是addgene的
质粒101:酵母载体博客帖子承认了这种技术存在一些缺点。需要普遍的S288C菌株拍摄很好的小心,因为未能完全补充具有多种毒卵或使用不同的营养营养背景,可以导致不同的生理效果并使任何代谢研究复杂化。的拉尔斯实验室创造了一个独特的工具与他们酵母原养型设备这是一组质粒,旨在通过补偿组氨酸(HIS3)、亮氨酸(LEU2)、尿嘧啶(URA3)、蛋氨酸(MET17)和赖氨酸(LYS2)缺陷及其组合,来弥补酵母菌株中未使用的auxotrophies。这个试剂盒中的23个质粒来自雷泽实验室自己的pHLUM小染色体载体除可用于恢复菌株原营养外,还可用于菌株的设计自我建立代谢合作(SeMeCo)群落.质粒序列中统一的多个克隆位点也允许在一系列营养缺陷标记下表达蛋白质。阅读更多关于雷泽实验室为酵母群落重要的新工具开放获取的文章

弓形虫Crispr淘汰汇总图书馆


弓形虫CRISPR来自ApiCoMplexan的寄生虫,导致严重的人和牲畜疾病,如疟疾和弓形虫病。尽管对全球健康重视,但大多数ApiCoMplexan基因仍保持不表达。最近的研究进行了
塞巴斯蒂安Lourido同事构成了了解这些寄生虫生物学的重要一步。在这项工作中,他们使用了CRISPR / CAS9技术来测量每种基因的贡献来自模型ApiCoMplexan生物体刚地弓形虫对人类成纤维细胞的感染

弓形虫利用sgRNA表达载体库(包含针对8158种预测的每一种的10个指南)转化构成Cas9表达的寄生虫生成突变体弓形虫蛋白质编码基因)。Lourido博士的研究表明,基因组规模的基因筛选是识别与耐药性有关的基因的一种有效方法。值得注意的是,这种方法也使Lourido的小组确定了约200个以前未被描述的基因,这些基因在尖复合体中是保守的,并且对基因的进化很重要弓形虫健康。其中16个基因在感染人类细胞过程中发挥了重要的作用,其中一个被称为“cladin -like apicomplexan microneme protein”(CLAMP)的基因在细胞感染过程中起着重要的启动作用弓形虫是疟疾寄生虫的无性循环所必需的。

找到Lourido CRISPR质粒

CRISPR-X: dcas9靶向点突变用于定向进化

Crispr X.定向演进是蛋白质工程的重要方法,但是难以产生足够的含量在天然基因组上下文中以寻找有用的突变体。Crispr-x,一个新系统Michael Bassik的实验室,克服这一障碍。在CRISPR-X中,dCas9被用来招募一个具有MS2发夹结合位点的sgRNA,然后再招募一个MS2融合的激活诱导胞苷脱氨酶(AID)超活性变体。

援助通常介导体细胞utdumution以产生多种抗体;在CRISPR-X系统中,AID *Δ类似地在每个GRNA指定的目标基因座处产生单个基础变化。在PAM站点的编辑窗口-50到+50 bp中,CrisPr-X以每500-1000bp的速率产生高达1的点突变。相比之下,DNA复制错误率为每10个9BP。

与WT CAS9不同,CRISPR-X产生很少的indels,因此它保持读取框架,而是产生不同的局部点突变。作为概念证明,HESS等。成功进化野生型绿色荧光蛋白使用CRISPR-X和随后的FACS排序对EGFP进行排序。他们还诱变了蛋白酶体亚基PSMB5,以发现对蛋白酶体抑制剂的抗性机制;CRISPR-X同时识别了先前的特征突变体和新的突变体。Hess等人设想CRISPR-X不仅是一种蛋白质工程工具,也是一种表征/工程启动子、增强子和其他调控元件的方法。

找出CRISPR-X质粒

MagnetO 2.0 - 神经系统的磁遥控器


2.0磁在…的领域光 -化学物质,科学家们总是在寻找新的执行器上,这是非侵入性的,可以快速且可逆地刺激神经元。最近的研究设计了对无线电波敏感的多组分执行器或允许磁遗传学控制,但这些致动器没有针对神经元系统设计。开发新的单组分工具进行神经元的磁遗传学控制,Guler Lab.设计了一种致动器,其中顺磁铁蛋白的两个亚基被连接到的c端TRPV4(压敏通道)。Guler实验室利用传输信号优化了驱动器的亚细胞定位,并为其命名2.0磁

利用magne2.0 - p2a - mcherry结构,实验室证实了magne2.0具有磁敏性,可以操纵细胞活性在体外.Guler实验室通过AAV注射后,继续在哺乳动物的大脑中测试了Magneto2.0,发现它可以增加大脑切片制备过程中神经元的活动。magne2.0也进行了测试体内通过表达斑马鱼和小鼠。这些体内研究表明,Magneto 2.0允许磁遥控神经元的激活。通过下面的链接找到Magneto 2.0质粒。

质粒ID 质粒名称 质粒型
74309. pcDNA3.0-TRPV4-p2A-ferritin-p2A-mCherry 哺乳动物表达
74308. pcDNA3.0-Magneto2.0-p2A-mCherry 哺乳动物表达
74334. PCR8-MagnetO2.0-P2A-MCHERRY 门户
74333. PCR8-MagnetO2.0. 门户
74307 pAAV-CMV-DIO-Magneto2.0-sNRPpA AAV
74306. Paav-CMV-DIO-TRPV4-P2A-FERRIN-SNRPPA AAV
74302 pDestTol2CG2-Neurog1-Magneto2.0-p2A-mCherry-pA 斑马鱼的表情

用于自动细菌表达的人激酶结构域构建

激酶结构域表达的系统发育树人类激酶的调控不当已经与几种疾病联系在一起,尤其是癌症.大量的化学生物学和药物研究都集中于开发选择性激酶抑制剂来探索这些信号通路或开发潜在的治疗方法,但表达和纯化人类激酶仍然具有挑战性。小分子激酶抑制剂通常以可溶性激酶结构域为靶点,但这些结构域通常不能很好地表达大肠杆菌没有合作伙伴的监管领域。

Chodera实验室最近编译了这一点人激酶结构域构建试剂盒,通过大规模表达筛选开发的人类激酶结构域文库,可用于生成在简单细菌表达系统中表达良好的his标记的人类激酶结构域(帕顿等人2016年).获得每个激酶催化结构域高表达的关键是用合适的磷酸酶表达它们,这项技术最初是由Markus Seeliger用于SRC和ABL的高产表达(Seeliger等人,2005年).在这个试剂盒中,λ磷酸酶(质粒79748)提高了丝氨酸/苏氨酸激酶在细菌中的表达,而YopH(残基164-468,质粒79749)增强酪氨酸激酶的表达。讨论所有序列和表达数据由Chodera实验室在线提供质粒是现在通过加入.该库中的所有激酶在PDB中具有可用的晶体结构。

  • Parton DL,Hanson Sm,Rodríguez-laureano L,Albanese Sk,Gradia S,Jeans C,Seeliger Ma,Levinson Nm,Chodera JD。Biorxiv预印刷品。2016年。全文
  • Seeliger MA, Young M, Henderso MN, Pellicena P, King DS, Falick AM, and Kuriyan J. Protein Sci. 2005。PubMedPMID: 16260764

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